[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: معرفي مجله :: آخرين شماره :: آرشيو مقالات :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
آرشیو مقالات::
در باره نشریه::
بانک‌ها و نمایه‌نامه‌ها::
هیئت تحریریه::
اعضای اجرایی::
ثبت نام::
راهنمای نگارش مقاله::
ارسال مقاله::
فرم تعهدنامه::
راهنما کار با وب سایت::
برای داوران::
پرسش‌های متداول::
فرایند ارزیابی و انتشار مقاله::
در باره کارآزمایی بالینی::
اخلاق در نشر::
در باره تخلفات پژوهشی::
رضایت‌آگاهانه‌شرکت‌درمطالعه::
لینکهای مفید::
تسهیلات پایگاه::
تماس با ما::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
Google Scholar

Citation Indices from GS

AllSince 2019
Citations66923004
h-index3117
i10-index20774
:: دوره 19، شماره 3 - ( پاییز 1396 ) ::
جلد 19 شماره 3 صفحات 23-15 برگشت به فهرست نسخه ها
اثر عصاره هیدروالکلی گیاه برازمبل بر سطح گلوکز و آنزیم‌های کبدی سرم موش‌های صحرایی دیابتی شده با استرپتوزوتوسین
شیوا آشگر طوسی1 ، مریم طهرانی پور 2، مرتضی بهنام رسولی3
1- کارشناس ارشد فیزیولوژی جانوری، گروه زیست شناسی، واحد مشهد، دانشگاه آزاد اسلامی، مشهد، ایران
2- دانشیار، دکتری فیزیولوژی جانوری، گروه زیست شناسی، واحد مشهد، دانشگاه آزاد اسلامی، مشهد، ایران ، maryam-tehranipour@yahoo.com
3- استاد، دکتری فیزیولوژی، گروه زیست شناسی، واحد مشهد، دانشگاه آزاد اسلامی، مشهد، ایران
چکیده:   (11220 مشاهده)

زمینه و هدف : دیابت یک ناهنجاری متابولیکی است که با هیپرگلیسمی ناشی از نقص در ترشح و عمل انسولین و یا هردو مشخص می‌گردد. گیاه برازمبل دارای اثر ضدباکتری و انگل، آنتی‌اکسیدانی، ضدالتهاب و ضددرد است. این مطالعه به منظور تعیین اثر عصاره هیدروالکلی گیاه برازمبل بر سطح گلوکز سرم و فعالیت آنزیم‌های کبدی موش‌های صحرایی سالم و دیابتی شده با استرپتوزوتوسین و مقایسه با داروی گلی‌بن‌گلامید انجام شد.

روش بررسی : در این مطالعه تجربی 60 سر موش صحرایی بالغ نر نژاد ویستار به‌طور تصادفی در 10 گروه 6 تایی تقسیم شدند. گروه‌ها شامل کنترل سالم، سالم دریافت کننده گلی‌بن‌گلامید، سالم تحت تیمار با عصاره هیدروالکلی گیاه برازمبل با دوزهای 150 و 300 و 600 میلی‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن، کنترل هیپرگلیسمی، کنترل مثبت (هیپرگلیسمی تحت درمان با داروی گلی‌بن‌گلامید)، هیپرگلیسمی تحت درمان عصاره هیدروالکلی گیاه برازمبل با دوزهای 150 و 300 و 600 میلی‌گرم بر کیلوگرم وزن بدن بودند. پس از انجام تیمارهای لازم، از حیوانات نمونه‌های خونی گرفته شد و میزان قند و آنزیم‌های کبدی (ALP, AST, ALT) مورد سنجش قرار گرفت. مقایسه‌ای نیز بین اثر عصاره هیدروالکلی گیاه برازمبل و داروی متداول گلی‌بن‌گلامید انجام شد.

یافته‌ها : نتایج حاکی از افزایش معنی‌دار آنزیم‌های کبدی در موش‌های صحرایی هیپرگلیسمی نسبت به گروه کنترل سالم بود. میانگین میزان آنزیم‌های AST ، ALT و ALP در گروه هیپرگلیسمی به ترتیب 286.83+-7.46، 172.16+-5.74، 526.17+-8.17 و در گروه کنترل سالم به ترتیب 239+-12.6، 100+-2.42 و 196.33+-6.82 بود. تیمار با دوزهای 150 و 300 و 600 عصاره گیاه در موش‌های صحرایی هیپرگلیسمی شده موجب کاهش معنی‌داری در سطح آنزیم‌های فوق در مقایسه با گروه کنترل هیپرگلیسمی گردید (P<0.05). میانگین میزان آنزیم‌های AST ، ALT و ALP در گروه تحت درمان با دوز mg/kg 150 عصاره به ترتیب 160.67+-6.29، 127.33+-5.23 و 260.33+-7.18 بود. میانگین میزان آنزیم‌های AST ، ALT و ALP در گروه تحت درمان با دوز mg/kg 300 عصاره به ترتیب 197.5+-6.71، 144.33+-8.82 و 201.67+-9.60 بود. میانگین میزان آنزیم‌های AST ، ALT و ALP در گروه تحت درمان با دوز mg/kg 600 عصاره به‌ترتیب 192.23+-8.23، 111.17+-6.13 و 329+-7.43 بود. در مقایسه‌ای که بین میزان اثربخشی عصاره هیدروالکلی برازمبل و داروی گلی‌بن‌گلامید بر گلوکز سرم و آنزیم‌های کبدی انجام شد؛ تیمار با عصاره گیاه در موش‌های صحرایی دیابتی شده کاهش معنی‌داری را نشان داد (P<0.05).

نتیجه‌گیری : عصاره هیدروالکلی گیاه برازمبل سبب کاهش سطح سرمی آنزیم‌های کبدی و گلوکز سرم در موش‌های صحرایی می‌گردد.

واژه‌های کلیدی: دیابت، برازمبل، آنزیم‌های کبدی، گلوکز سرم، موش صحرایی
متن کامل [PDF 562 kb] [English Abstract]   (9298 دریافت) |   |   چکیده (HTML)  (820 مشاهده)  
نوع مطالعه: تحقيقي | موضوع مقاله: فیزیولوژی - فارماکولوژی
فهرست منابع
1. Bierman EL, Amaral JA, Belknap BH. Hyperlipemia and diabetes mellitus. Diabetes. 1966 Sep; 15(9): 675-79.
2. Diwan FH, Abdel-Hassan IA, Mohammed ST. Effect of saponin on mortality and histopathological changes in mice. East Mediterr Health J. 2000 Mar-May; 6(2-3): 345-51.
3. Fukuda T, Ito H, Yoshida T. Effect of the walnut polyphenol fraction on oxidative stress in type 2 diabetes mice. Biofactors. 2004; 21(1-4): 251-53.
4. Holman RR, Turner RC. Oral agents and insulin in the treatment of NIDDM. In: Pickup J, Williams G. Text book of Diabetes. Oxford: Blackwell. 1991; pp: 467-69.
5. Marles RJ, Farnsworth NR. Antidiabetic plants and their active constituents. Phytomedicine. 1995 Oct; 2(2): 137-89. doi:10.1016/S0944-7113(11)80059-0
6. Dey L, Attele AS, Yuan CS. Alternative therapies for type 2 diabetes. Altern Med Rev. 2002 Feb; 7(1): 45-58.
7. Ghahraman A. [Iran cormqphit(plant systematic)]. 3rd ed. Tehran: Tehran University Publication Center. 1994; pp: 294-95. [Persian]
8. Ebrahimi Fakhr R. [Evaluation of antioxidant activity of essential oils and phenolic extracts of the aerial parts of perovskia abrotanoides Karel in different phonological stages, and antioxidant property of the most powerful oil and extract on living cells]. M.Sc Thesis in Plant Physiology. Faculty of Science. Ferdowsi University of Mashhad. 2014. [Persian]
9. Khaliq S, Volk FJ, Frahm AW. Phytochemical investigation of Perovskia abrotanoides. Planta Med. 2007 Jan; 73(1): 77-83. doi:10.1055/s-2006-951766
10. Sairafianpour M, Christensen J, Staerk D, Budnik BA, Kharazmi A, Bagherzadeh K, et al. Leishmanicidal, antiplasmodial, and cytotoxic activity of novel diterpenoid 1,2-quinones from Perovskia abrotanoides: new source of tanshinones. J Nat Prod. 2001 Nov; 64(11): 1398-403.
11. Park SU, Lee SY. Anthraquinone production by hairy root culture of Rubia akane Nakai: Influence of media and auxin treatment. Sci Res Essays. 2009; 4: 690-93.
12. Park S, KimY, Lee S. Establishment of hairy root culture of Rubia akane Nakai for alizarin and purpurin production. Sci Res Essays. 2009; 4: 94-97.
13. Park EJ, Zhao YZ, Kim YC, Sohn DH. Preventive effects of a purified extract isolated from Salvia miltiorrhiza enriched with tanshinone I, tanshinone IIA and cryptotanshinone on hepatocyte injury in vitro and in vivo. Food Chem Toxicol. 2009; 47(11): 2742-48. https://doi.org/10.1016/j.fct.2009.08.007
14. Fan GW, Gao XM, Wang H, Zhu Y, Zhang J, Hu LM, et al. The anti-inflammatory activities of Tanshinone IIA, an active component of TCM, are mediated by estrogen receptor activation and inhibition of iNOS. J Steroid Biochem Mol Biol. 2009 Feb; 113(3-5): 275-80. doi:10.1016/j.jsbmb.2009.01.011
15. Ballabh B, Chaurasia OP, Ahmed Z, Singh SB. Traditional medicinal plants of cold desert Ladakh-used against kidney and urinary disorders. J Ethnopharmacol. 2008 Jul; 118(2): 331-39. doi:10.1016/j.jep.2008.04.022
16. Cetin H, Erler F, Yanikoglu A. A comparative evaluation of Origanum onites essential oil and its four major components as larvicides against the pine processionary moth, Thaumetopoea wilkinsoni Tams. Pest Manag Sci. 2007 Aug; 63(8): 830-33. doi:10.1002/ps.1401
17. Sajjadi SE, Mehregan I, Khatamsaz M, Asgari Gh. Chemical composition of the essential oil of Perovskia abrotanoides Karel. growing wild in Iran. Flavour Fragr J. 2008; 20(4): 445-46. doi:10.1002/ffj.1508
18. Yoon Y, Kim YO, Jeon WK, Park HJ, Sung HJ. Tanshinone IIA isolated from Salvia miltiorrhiza BUNGE induced apoptosis in HL60 human premyelocytic leukemia cell line. J Ethnopharmacol. 1999 Dec; 68(1-3): 121-27.
19. Mazandarani M, Beyk Mohammadi M, Bayat H. Ethno pharmacology and investigationsecondary metabolites of provskia abrotanoides Karel. In two natural regions, North of Iran. J Plant Sci Res. 2010; 4(4): 69-77.
20. Devasena T, Menon VP. Enhancement of circulatory antioxidants by fenugreek during 1,2-dimethylhydrazine-induced rat colon carcinogenesis. J Biochem Mol Biol Biophys. 2002 Aug; 6(4): 289-92. doi:10.1080/10258140290030915
21. Cicchetti E, Chaintreau A. Comparison of extraction techniques and modeling of accelerated solvent extraction for the authentication of natural vanilla flavors. J Sep Sci. 2009 Jun; 32(11): 1957-64. doi:10.1002/jssc.200800650
22. Kharazi-Nejad E, Nakhaee A, Taheri M. [Increased serum superoxide dismutase and catalase activities in Streptozotocin-induced diabetic rats]. Med Lab J. 2014; 7(4): 1-8. [Article in Persian]
23. Mokhtary M, Sharifi E, Shahamir-Tabatabaee M. [The effect of carob extract on liver function test in diabetic male rat]. J Shahrekord Univ Med Sci. 2013; 15(3): 40-47. [Article in Persian]
24. Atiba AS, Oparind DP, Babatunde OA, Niranatiba AT, Jimoh AK, Adepeju AA. Liver enzymes and lipid profile among type 2 diabetic patients in Osogbo Nigeria. Greener J Med Sci. 2013; 3(5): 174-78. doi:10.15580/GJMS.2013.5.011313373
25. García-Lafuente A, Guillamón E, Villares A, Rostagno MA, Martínez JA. Flavonoids as anti-inflammatory agents: implications in cancer and cardiovascular disease. Inflamm Res. 2009 Sep; 58(9): 537-52. doi:10.1007/s00011-009-0037-3
26. Gabay C. Interleukin-6 and chronic inflammation. Arthritis Res Ther. 2006; 8(Suppl 2): S3. doi:10.1186/ar1917
27. Concepción Navarro M, Pilar Montilla M, Martín A, Jiménez J, Pilar Utrilla M. Free radical scavenger and antihepatotoxic activity of Rosmarinus tomentosus. Planta Med. 1993 Aug; 59(4): 312-14.
28. Singh PK, Baxi D, Banerjee S, Ramachandran AV. Therapy with methanolic extract of Pterocarpus marsupium Roxb and Ocimum sanctum Linn reverses dyslipidemia and oxidative stress in alloxan induced type I diabetic rat model. Exp Toxicol Pathol. 2012 Jul; 64(5): 441-48. doi:10.1016/j.etp.2010.10.011
29. Fuhrman B, Aviram M. Flavonoids protect LDL from oxidation and attenuate atherosclerosis. Curr Opin Lipidol. 2001 Feb; 12(1): 41-48.
30. Loew D, Kaszkin M. Approaching the problem of bioequivalence of herbal medicinal products. Phytother Res. 2002 Dec; 16(8): 705-11. doi:10.1002/ptr.1248
31. Stein RA, Michielli DW, Glantz MD, Sardy H, Cohen A, Goldberg N, et al. Effects of different exercise training intensities on lipoprotein cholesterol fractions in healthy middle-aged men. Am Heart J. 1990 Feb; 119(2 Pt 1): 277-83.
32. Heidari MR, Azad EM, Mehrabani M. Evaluation of the analgesic effect of Echium amoenum Fisch & C.A. Mey. extract in mice: possible mechanism involved. J Ethnopharmacol. 2006 Feb; 103(3): 345-49. doi:10.1016/j.jep.2005.08.027
33. Jung UJ, Lee MK, Jeong KS, Choi MS. The hypoglycemic effects of hesperidin and naringin are partly mediated by hepatic glucose-regulating enzymes in C57BL/KsJ-db/db mice. J Nutr. 2004 Oct; 134(10): 2499-503.
34. Khan A, Safdar M, Ali Khan MM, Khattak KN, Anderson RA. Cinnamon improves glucose and lipids of people with type 2 diabetes. Diabetes Care. 2003 Dec; 26(12): 3215-18.
ارسال پیام به نویسنده مسئول


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Ashgar Toosi S, Tehranipour M, Behnam Rassoli M. Effect of hydro-alcoholic extract of Proveskia abrotanoides on blood glucose and liver enzymes level in streptozotocin-induced diabetic rats. J Gorgan Univ Med Sci 2017; 19 (3) :15-23
URL: http://goums.ac.ir/journal/article-1-3133-fa.html

آشگر طوسی شیوا، طهرانی پور مریم، بهنام رسولی مرتضی. اثر عصاره هیدروالکلی گیاه برازمبل بر سطح گلوکز و آنزیم‌های کبدی سرم موش‌های صحرایی دیابتی شده با استرپتوزوتوسین . مجله علمي دانشگاه علوم پزشكي گرگان. 1396; 19 (3) :15-23

URL: http://goums.ac.ir/journal/article-1-3133-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 19، شماره 3 - ( پاییز 1396 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی گرگان Journal of Gorgan University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.05 seconds with 38 queries by YEKTAWEB 4645