[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: معرفي مجله :: آخرين شماره :: آرشيو مقالات :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
آرشیو مقالات::
در باره نشریه::
بانک‌ها و نمایه‌نامه‌ها::
هیئت تحریریه::
اعضای اجرایی::
ثبت نام::
راهنمای نگارش مقاله::
ارسال مقاله::
فرم تعهدنامه::
راهنما کار با وب سایت::
برای داوران::
پرسش‌های متداول::
فرایند ارزیابی و انتشار مقاله::
در باره کارآزمایی بالینی::
اخلاق در نشر::
در باره تخلفات پژوهشی::
لینکهای مفید::
تسهیلات پایگاه::
تماس با ما::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
Google Scholar

Citation Indices from GS

AllSince 2019
Citations68183115
h-index3117
i10-index21178
:: ::
برگشت به فهرست مقالات برگشت به فهرست نسخه ها
اثر ضدقارچی عصاره‌های اترنفت، دی‌کلرومتان، اتیل‌استات، اتانول و هیدرواتانول اندام هوایی گیاه درمنه‌های خراسانی، شرقی و معمولی
علی میکاییلی1 ، سجاد ناصری2 ، محمدمهدی حسینی3 ، سیداحمد امامی4 ، مهدی مجرب* 5
1- دانشیار، گروه انگل‌شناسی و قارچ شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران.
2- استادیار فارماکوگنوزی، گروه فارماکوگنوزی - بیوتکنولوژی دارویی، دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران ، ایران.
3- دانشجوی رشته داروسازی، کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران.
4- استاد فارماکوگنوزی، گروه داروسازی سنتی، دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی مشهد، مشهد، ایران.
5- دانشیار فارماکوگنوزی، مرکز تحقیقات علوم دارویی، پژوهشکده سلامت، گروه فارماکوگنوزی و زیست‌فناوری دارویی، دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، کرمانشاه، ایران. ، mmojarrab@kums.ac.ir
چکیده:   (286 مشاهده)

زمینه و هدف: یکی از بیماری‌های مهم جلدی انسان و حیوانات، درماتوفیتوزیس است که مقاومت آن به درمان‌های رایج رو به افزایش است. این مطالعه به منظور تعیین میزان فعالیت برون‌تنی ضدقارچی عصاره‌های اترنفت، دی‌کلرومتان، اتیل‌استات، اتانول و هیدرواتانول اندام هوایی گیاه درمنه‌های خراسانی (Artemisia khorassanica)، شرقی (Artemisia scopari) و معمولی (Artemisia vulgaris) علیه قارچ‌های شایع عامل بیماری درماتوفیتوزیس شامل تریکوفیتون روبروم (Trichophyton rubrum)، تریکوفیتون وروکوزوم (Trichophyton verrucosum)، اپیدرموفیتون فلوکوزوم (Epidermophyton floccosum) و میکروسپوروم کانیس (Microsporum canis) انجام شد.


روش بررسی: این مطالعه توصیفی روی عصاره‌های مختلف اندام هوایی درمنه‌های خراسانی، شرقی و معمولی علیه جدایه‌های قارچی Trichophyton rubrum، Trichophyton verrucosum، Microsporum canis و Epidermophyton floccosum انجام شد. اندام‌‌های هوایی سه گونه درمنه خراسانی، درمنه شرقی و درمنه معمولی با استفاده از پنج حلال اتر نفت، دی کلرومتان، اتیل استات، اتانول و هیدرواتانول (50%) عصاره‌گیری و عصاره‌های حاصل برای اثرات ضددرماتوفیتی علیه Trichophyton rubrum، Trichophyton verrucosum، Microsporum canis و Epidermophyton floccosum غربالگری شدند. سپس آزمایش حداقل غلظت بازدارندگی (MIC) براساس روش رقیق‌سازی در آگار انجام شد. فعال‌ترین عصاره‌ها در آزمون‌های مقدماتی فیتوشیمیایی مورد بررسی قرار گرفتند.


یافته‌ها: در غربالگری اولیه، میکروسپوروم کانیس و تریکوفیتون وروکوزوم به ترتیب حساسیت (86.66%) و مقاومت (100%) بیشتری را به عصاره‌های مورد مطالعه نشان دادند. عصاره‌های حاصل از درمنه شرقی، از گسترده‌ترین دامنه فعالیت برخوردار بودند. موثرترین عصاره‌های به کار رفته در آزمایش‌ها نیز با MIC برابر با 78.12 میکروگرم بر میلی‌لیتر از همین گیاه بودند. عصاره‌های هیدرواتانولی تمام گونه‌های گیاهی کمترین فعالیت ضددرماتوفیتی را بروز دادند. نتایج مطالعات مقدماتی فیتوشیمیایی، حضور مشترک ترپنوییدها را در تمام عصاره‌های اتر نفتی و دی کلرومتانی گونه‌های گیاهی نشان داد.


نتیجه‌گیری: برخی ترکیبات چربی دوست موجود در عصاره‌های مختلف به ویژه عصاره‌های اتر نفتی و دی کلرومتانی درمنه شرقی فعالیت قابل توجه برون‌تنی ضددرماتوفیتی دارد.

واژه‌های کلیدی: درمنه، تینه آ، تریکوفیتون روبروم، تریکوفیتون وروکوزوم، اپیدرموفیتون فلوکوزوم، میکروسپوروم کانیس
Article ID: Vol26-18
متن کامل [PDF 385 kb]   (551 دریافت)    
نوع مطالعه: تحقيقي | موضوع مقاله: قارچ‌شناسی
* نشانی نویسنده مسئول: کرمانشاه، بلوار شهید شیرودی، خیابان دانشگاه، بلوار پرستار، دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه، دانشکده داروسازی، تلفن (داخلی 314) 34276489-083
فهرست منابع
1. Neji S, Makni F, Cheikhrouhou F, Sellami A, Sellami H, Marreckchi S, et al. Epidemiology of dermatophytoses in Sfax, Tunisia. Mycoses. 2009 Nov;52(6):534-38. doi: 10.1111/j.1439-0507.2008.01651.x. [DOI] [PubMed]
2. Achterman RR, White TC. Dermatophyte virulence factors: identifying and analyzing genes that may contribute to chronic or acute skin infections. Int J Microbiol. 2012;2012:358305. doi: 10.1155/2012/358305. [DOI] [PubMed]
3. Sharma V, Kumawat KT, Sharma A, Seth R, Chandra S. Dermatophytes: Diagnosis of dermatophytosis and its treatment. African Journal of Microbiology Research. 2015;9(19):1286-93. doi: 10.5897/AJMR2015.7374. [Link] [DOI]
4. AL-Khikani FHO. Dermatophytosis a Worldwide Contiguous Fungal Infection: Growing Challenge and Few Solutions. Biomedical and Biotechnology Research Journal (BBRJ). 2020;4(2):117-22. doi:10.4103/bbrj.bbrj_1_20. [Link] [DOI]
5. Bell-Syer SE, Hart R, Crawford F, Torgerson DJ, Tyrrell W, Russell I. Oral treatments for fungal infections of the skin of the foot. Cochrane Database Syst Rev. 2002;(2):CD003584. doi: 10.1002/14651858.CD003584. [DOI] [PubMed]
6. Mikaeili A, Mahmodi A, Rezaei M, Ebrahimi A. [The dermatophytes species frequency in referral patients to medical mycology lab of Kermanshah-2012]. Medical Journal of Mashhad University of Medical Sciences. 2015;57(9):990-94. doi: 10.22038/mjms.2015.3876. [Article in Persian] [Link] [DOI]
7. Gupta AK, Cooper EA. Update in antifungal therapy of dermatophytosis. Mycopathologia. 2008 Nov-Dec;166(5-6):353-67. doi: 10.1007/s11046-008-9109-0. [DOI] [PubMed]
8. Aglarova AM, Zilfikarov IN, Severtseva OV. Biological characteristics and useful properties of tarragon (Artemisia dracunculus L.) (review). Pharm Chem J. 2008;42:81-86. doi: 10.1007/s11094-008-0064-3. [Link] [DOI]
9. The Herb Society of America. Artemesia: An Essential Guide 2014; The Herb Society of America: Kirtland, OH, USA, 2014.
10. Mozaffarian V. A Dictionary of Iranian Plant Names. 7th ed. Tehran: Farhang Moaser Publishers. 2013; pp. 190-210.
11. Bora KS, Sharma A. The genus Artemisia: a comprehensive review. Pharm Biol. 2011 Jan;49(1):101-109. doi: 10.3109/13880209.2010.497815. [DOI] [PubMed]
12. Obistioiu D, Cristina RT, Schmerold I, Chizzola R, Stolze K, Nichita I, et al. Chemical characterization by GC-MS and in vitro activity against Candida albicans of volatile fractions prepared from Artemisia dracunculus, Artemisia abrotanum, Artemisia absinthium and Artemisia vulgaris. Chem Cent J. 2014 Jan;8(1):6. doi: 10.1186/1752-153X-8-6. [DOI] [PubMed]
13. Blagojević P, Radulović N, Palić R, Stojanović G. Chemical composition of the essential oils of serbian wild-growing Artemisia absinthium and Artemisia vulgaris. J Agric Food Chem. 2006 Jun;54(13):4780-89. doi: 10.1021/jf060123o. [DOI] [PubMed]
14. Monwar S, Hossain MA, Boby F, Begum H, Begum N. Diagnosis of Dermatophytosis by Conventional Methods and Comparatative analysis of Sabouraud Dextrose Agar and Dermatophyte Test Medium for Isolation of Dermatophytes. Mymensingh Med J. 2017 Apr;26(2):293-99. [PubMed]
15. Mikaeili A, Ghasemi S, Salmani S, Modarresi M, Mojarrab M. [Antifungal effects of various extracts from three Artemisia species against dermatophytosis fungal agents]. J Birjand Univ Med Sci. 2023;30(1):33-43. [Article in Persian] [Link]
16. Alamgir A. Therapeutic use of medicinal plants and their extracts. 1st ed. New York: Springer. 2017; pp: 721, 729, 790.
17. Patil AS. Plant Secondary Metabolites: Isolation, Characterization & Biological Properties. 1st ed. New Delhi: Studera Press. 2020; p:86.
18. Aiyegoro OA, Okoh AI. Preliminary phytochemical screening and in vitro antioxidant activities of the aqueous extract of Helichrysum longifolium DC. BMC Complement Altern Med. 2010 May;10:21. doi: 10.1186/1472-6882-10-21. [DOI] [PubMed]
19. Mahajan S, Tilak R, Kaushal SK, Mishra RN, Pandey SS. Clinico-mycological study of dermatophytic infections and their sensitivity to antifungal drugs in a tertiary care center. Indian J Dermatol Venereol Leprol. 2017 Jul-Aug;83(4):436-40. doi: 10.4103/ijdvl.IJDVL_519_16. [DOI] [PubMed]
20. Ginter-Hanselmayer G, Weger W, Ilkit M, Smolle J. Epidemiology of tinea capitis in Europe: current state and changing patterns. Mycoses. 2007;50 Suppl 2:6-13. doi: 10.1111/j.1439-0507.2007.01424.x. [DOI] [PubMed]
21. Aneke CI, Otranto D, Cafarchia C. Therapy and Antifungal Susceptibility Profile of Microsporum canis. J Fungi (Basel). 2018 Sep;4(3):107. doi: 10.3390/jof4030107. [DOI] [PubMed]
22. Akhil GC, Usha NP, Madhavan UN. In vitro anti-dermatophytic activity of essential oil extracted from Artemisia japonica Thunb. The Pharma Innovation Journal. 2022; 11(1S): 862-64. [Link]
23. Razzaq Mohammed F, Hameed Abboud Z, Ali Hussein K. Effects of some plants extracts in growth of some dermatophytes. Journal of Kerbala University. 2023;20(1):99-114. [Link]
24. Mirjalili MH, Tabatabaei SMF, Hadian J, Nejad Ebrahimi S, Sonboli A. Phenological Variation of the Essential Oil of Artemisia scoparia Waldst. et Kit from Iran. Journal of Essential Oil Research. 2007;19(4):326-29. doi: 10.1080/10412905.2007.9699294. [Link] [DOI]
25. Lopes-Lutz D, Alviano DS, Alviano CS, Kolodziejczyk PP. Screening of chemical composition, antimicrobial and antioxidant activities of Artemisia essential oils. Phytochemistry. 2008 May;69(8):1732-38. doi: 10.1016/j.phytochem.2008.02.014. [DOI] [PubMed]
26. Vlatka V, Snežana T, Peđa J, Marina S, Slobodan M, Vele T. Antifungal activity of davanone-type sesquiterpenes from Artemisia lobelli var. conescens. Journal of the Serbian Chemical Society. 2004;69(11):969-72. doi: 10.2298/JSC0411969V. [Link] [DOI]
27. Tan RX, Lu H, Wolfender JL, Yu TT, Zheng WF, Yang L, et al. Mono- and sesquiterpenes and antifungal constituents from Artemisia species. Planta Med. 1999 Feb;65(1):64-67. doi: 10.1055/s-1999-13965. [DOI] [PubMed]
28. Mojarrab M, Shiravand A, Delazar A, Heshmati Afshar F. Evaluation of in vitro antimalarial activity of different extracts of Artemisia aucheri Boiss. and A. armeniaca Lam. and fractions of the most potent extracts. ScientificWorldJournal. 2014 Jan;2014:825370. doi: 10.1155/2014/825370. [DOI] [PubMed]
29. Taghizadeh Rabe SZ, Mahmoudi M, Ahi A, Emami SA. Antiproliferative effects of extracts from Iranian Artemisia species on cancer cell lines. Pharm Biol. 2011 Sep;49(9):962-69. doi: 10.3109/13880209.2011.559251. [DOI] [PubMed]
30. Zhou R, Dzomba P, Gwatidzo, L. Chemical profiling of antifungal Dicerocaryum senecioides and Diospyros mespiliformis extracts using TLC-p-iodonitrotetrazolium violet assay and GC–MS/MS. Futur J Pharm Sci. 2023;9:112. doi: 10.1186/s43094-023-00565-2. [Link] [DOI]
31. Rajendra Prasad N, Anandi C, Balasubramanian S, Pugalendi KV. Antidermatophytic activity of extracts from Psoralea corylifolia (Fabaceae) correlated with the presence of a flavonoid compound. J Ethnopharmacol. 2004 Mar;91(1):21-24. doi: 10.1016/j.jep.2003.11.010. [DOI] [PubMed]
32. Aboody MSA, Mickymaray S. Anti-Fungal Efficacy and Mechanisms of Flavonoids. Antibiotics (Basel). 2020 Jan;9(2):45. doi: 10.3390/antibiotics9020045. [DOI] [PubMed]
ارسال پیام به نویسنده مسئول


XML   English Abstract   Print



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
برگشت به فهرست مقالات برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی گرگان Journal of Gorgan University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.05 seconds with 38 queries by YEKTAWEB 4652