[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: معرفي مجله :: آخرين شماره :: آرشيو مقالات :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
آرشیو مقالات::
در باره نشریه::
بانک‌ها و نمایه‌نامه‌ها::
هیئت تحریریه::
اعضای اجرایی::
ثبت نام::
راهنمای نگارش مقاله::
ارسال مقاله::
فرم تعهدنامه::
راهنما کار با وب سایت::
برای داوران::
پرسش‌های متداول::
فرایند ارزیابی و انتشار مقاله::
در باره کارآزمایی بالینی::
اخلاق در نشر::
در باره تخلفات پژوهشی::
لینکهای مفید::
تسهیلات پایگاه::
تماس با ما::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
Google Scholar

Citation Indices from GS

AllSince 2020
Citations73102962
h-index3317
i10-index21566
:: دوره 19، شماره 2 - ( تابستان 1396 ) ::
جلد 19 شماره 2 صفحات 37-32 برگشت به فهرست نسخه ها
اثر عامل تحریک کننده کلنی گرانولوسیت بر میزان تخمک‌گذاری و موفقیت لانه‌گزینی رویان‌های موش سوری
فرناز گلشن1 ، مجید شهبازی2 ، کامران حیدری*3
1- دانشجوی کارشناسی ارشد علوم تشریحی، گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، کمیته تحقیقات دانشجویی، دانشگاه علوم پزشکی گلستان، گرگان، ایران
2- دانشیار، مرکز تحقیقات پزشکی سلولی و مولکولی، دانشگاه علوم پزشکی گلستان، گرگان، ایران
3- دانشیار، گروه علوم تشریحی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی گلستان، گرگان، ایران ، haidarikamran@goums.ac.ir
چکیده:   (13612 مشاهده)

زمینه و هدف : عامل تحریک کننده کلنی گرانولوسیت (G-CSF) و گیرنده آن در فولیکول‌های در حال رشد، سلول‌های بافت جنینی و دستگاه تولید مثل وجود داشته و تجمع سرمی G-CSF به‌طور آشکاری در زمان تخمک‌گذاری افزایش می‌یابد. لذا این مطالعه به منظور تعیین اثر عامل تحریک کننده کلنی گرانولوسیت بر میزان تخمک‌گذاری و موفقیت لانه‌گزینی رویان‌های حاصل از آمیزش موش سوری انجام شد.

روش بررسی : این مطالعه تجربی روی 40 سر موش سوری ماده نژاد NMRI در دو گروه کنترل و تیمار و 10 سر موش سوری نر انجام شد. در هر دو گروه به‌منظور تحریک تخمدان و القای اوولاسیون به ترتیب 10 واحد PMSG و 48 ساعت بعد 10 واحد hCG به‌صورت داخل صفاقی و تک‌دوز به ازای هر موش تزریق شد. سپس در گروه تیمار، هم‌زمان با تزریق PMSG ، 50 µg/kg از G-CSF و در گروه کنترل نیز در همین مرحله و هم‌حجم با آن نرمال سالین به‌صورت داخل صفاقی تزریق ‌گردید. نیمی از موش‌های گروه کنترل و تیمار پس از گذشت 16تا 18ساعت از آخرین تزریق به روش دررفتگی مهره‌های گردنی کشته شدند تا تعداد تخمک‌های آزادشده به‌وسیله میکروسکوپ اینورت بررسی شود. نیمی دیگر از موش‌های گروه کنترل و تیمار با موش‌های نر آمیزش داده شدند و پس از گذشت 16 روز بعد از لقاح موش‌های ماده باردار با همان روش کشته و جنین‌های حاصل از نظر تعداد بررسی شدند.

یافته‌ها : میانگین تخمک‌های آزادشده در گروه تیمار (1.25±18.5) بیش از گروه کنترل (1.32±12.1) بود (P<0.05). میزان لانه‌گزینی در گروه کنترل و تیمار از نظر آماری تفاوت معنی‌داری نشان نداد.

نتیجه‌گیری : علی‌رغم این که عامل تحریک کننده کلنی گرانولوسیت نتوانست بر تعداد لانه‌گزینی اثر داشته باشد؛ ولی موجب افزایش تعداد تخمک‌های آزاد شده گردید.

واژه‌های کلیدی: عامل تحریک کننده کلنی گرانولوسیت، تخمک گذاری، موش سوری
متن کامل [PDF 289 kb] [English Abstract]   (19997 دریافت) |   |   چکیده (HTML)  (1549 مشاهده)  
نوع مطالعه: تحقيقي | موضوع مقاله: بیولوژی تولید مثل
* نشانی نویسنده مسئول: گرگان، دانشگاه علوم پزشکی گلستان، دانشکده پزشکی، گروه علوم تشریحی، تلفن 32421651-017 (داخلی 327) ، نمابر 32440225
فهرست منابع
1. Büscher U, Chen FC, Kentenich H, Schmiady H. Cytokines in the follicular fluid of stimulated and non-stimulated human ovaries; is ovulation a suppressed inflammatory reaction? Hum Reprod. 1999 Jan; 14(1): 162-6.
2. Ingman WV, Jones RL. Cytokine knockouts in reproduction: the use of gene ablation to dissect roles of cytokines in reproductive biology. Hum Reprod Update. 2008 Mar-Apr; 14(2): 179-92.
3. Pollard JW. Role of colony-stimulating factor-1 in reproduction and development. Mol Reprod Dev. 1997 Jan; 46(1): 54-60. doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199701)46: 1<54::AID-MRD9>3.0.CO;2-Q
4. Kaushansky K. Lineage-specific hematopoietic growth factors. N Engl J Med. 2006 May; 354(19): 2034-45.
5. Morstyn G, Burgess AW. Hemopoietic growth factors: a review. Cancer research. 1988; 48(20): 5624-37.
6. Giacomini G, Tabibzadeh SS, Satyaswaroop PG, Bonsi L, Vitale L, Bagnara GP, et al. Epithelial cells are the major source of biologically active granulocyte macrophage colony-stimulating factor in human endometrium. Hum Reprod. 1995 Dec; 10(12): 3259-63.
7. Uzumaki H, Okabe T, Sasaki N, Hagiwara K, Takaku F, Tobita M, et al. Identification and characterization of receptors for granulocyte colony-stimulating factor on human placenta and trophoblastic cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 1989 Dec; 86(23): 9323–26.
8. Shorter SC, Vince GS, Starkey PM. Production of granulocyte colony-stimulating factor at the materno-foetal interface in human pregnancy. Immunology. 1992 Mar; 75(3): 468-74.
9. Saito S, Fukunaga R, Ichijo M, Nagata S. Expression of granulocyte colony-stimulating factor and its receptor at the fetomaternal interface in murine and human pregnancy. Growth Factors. 1994; 10(2): 135-43.
10. McCracken S, Layton JE, Shorter SC, Starkey PM, Barlow DH, Mardon HJ. Expression of granulocyte-colony stimulating factor and its receptor is regulated during the development of the human placenta. J Endocrinol. 1996 May; 149(2): 249-58.
11. McCracken SA, Grant KE, MacKenzie IZ, Redman CW, Mardon HJ. Gestational regulation of granulocyte-colony stimulating factor receptor expression in the human placenta. Biol Reprod. 1999 Apr; 60(4): 790-6.
12. Bussolino F, Wang JM, Defilippi P, Turrini F, Sanavio F, Edgell CJ, et al. Granulocyte- and granulocyte-macrophage-colony stimulating factors induce human endothelial cells to migrate and proliferate. Nature. 1989 Feb; 337(6206): 471-3.
13. Avalos BR, Gasson JC, Hedvat C, Quan SG, Baldwin GC, Weisbart RH, et al. Human granulocyte colony-stimulating factor: biologic activities and receptor characterization on hematopoietic cells and small cell lung cancer cell lines. Blood. 1990 Feb; 75(4): 851-7.
14. Tachibana M, Miyakawa A, Uchida A, Murai M, Eguchi K, Nakamura K, et al. Granulocyte colony-stimulating factor receptor expression on human transitional cell carcinoma of the bladder. Br J Cancer. 1997; 75(10): 1489-96.
15. Salmassi A, Schmutzler AG, Huang L, Hedderich J, Jonat W, Mettler L. Detection of granulocyte colony-stimulating factor and its receptor in human follicular luteinized granulosa cells. Fertil Steril. 2004 Mar; 81 Suppl 1: 786-91. doi:10.1016/j.fertnstert.2003.09.039
16. Salmassi A, Zhang Z, Schmutzler AG, Koch K, Buck S, Jonat W, et al. Expression of mRNA and protein of macrophage colony-stimulating factor and its receptor in human follicular luteinized granulosa cells. Fertil Steril. 2005 Feb; 83(2): 419-25. doi:10.1016/j.fertnstert.2004.06.072
17. Yanagi K, Makinoda S, Fujii R, Miyazaki S, Fujita S, Tomizawa H, et al. Cyclic changes of granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF) mRNA in the human follicle during the normal menstrual cycle and immunolocalization of G-CSF protein. Hum Reprod. 2002 Dec; 17(12): 3046-52.
18. Scarpellini F, Sbracia M. Use of granulocyte colony-stimulating factor for the treatment of unexplained recurrent miscarriage: a randomised controlled trial. Hum Reprod. 2009 Nov; 24(11): 2703-8. doi:10.1093/humrep/dep240
19. Lédée N, Frydman R, Osipova A, Taieb J, Gallot V, Lombardelli L, et al. Levels of follicular G-CSF and interleukin-15 appear as noninvasive biomarkers of subsequentsuccessful birth in modified natural in vitro fertilization/intracytoplasmic sperm injection cycles. Fertil Steril. 2011 Jan; 95(1): 94-8. doi:10.1016/j.fertnstert.2010.03.010
20. Makinoda S, Mikuni M, Furuta I, Okuyama K, Sagawa T, Fujimoto S. Serum concentration of endogenous G-CSF in women during the menstrual cycle and pregnancy. Eur J Clin Invest. 1995 Nov; 25(11): 877-9.
21. Makinoda S, Mikuni M, Sogame M, Kobamatsu Y, Furuta I, Yamada H, et al. Erythropoietin, granulocyte-colony stimulating factor, interleukin-1 beta and interleukin-6 during the normal menstrual cycle. Int J Gynaecol Obstet. 1996 Dec; 55(3): 265-71.
22. Kahyaoglu I, Yılmaz N, Timur H, Inal HA, Erkaya S. Granulocyte colony-stimulating factor: A relation between serum and follicular fluid levels and in-vitro fertilization outcome in patients with polycystic ovary syndrome. Cytokine. 2015 Jul; 74(1): 113-6. doi:10.1016/j.cyto.2014.09.002
23. Cai L, Jeon Y, Yoon JD, Hwang SU, Kim E, Park KM, et al. The effects of human recombinant granulocyte-colony stimulating factor treatment during in vitromaturation of porcine oocyte on subsequent embryonic development. Theriogenology. 2015 Oct; 84(7): 1075-87. doi:10.1016/j.theriogenology.2015.06.008
24. Skaznik-Wikiel ME, McGuire MM, Sukhwani M, Donohue J, Chu T, Krivak TC, et al. Granulocyte colony-stimulating factor with or without stem cell factor extends time to premature ovarian insufficiency in female mice treated with alkylating chemotherapy. Fertil Steril. 2013 Jun; 99(7): 2045-54.e3. doi:10.1016/j.fertnstert.2013.01.135
25. Visani G, Manfroi S. G-CSF in the biology and treatment of acute myeloid leukemias. Leukemia & lymphoma. 1995; 18(5-6): 423-28.
26. Patrizio P, Sakkas D. From oocyte to baby: a clinical evaluation of the biological efficiency of in vitro fertilization. Fertil Steril. 2009 Apr; 91(4): 1061-6. doi:10.1016/j.fertnstert.2008.01.003
27. Hock DL, Huhn RD, Kemmann E. Leukocytosis in response to exogenous gonadotrophin stimulation. Hum Reprod. 1997 Oct; 12(10): 2143-6.
28. Balaban B, Urman B. Effect of oocyte morphology on embryo development and implantation. Reprod Biomed Online. 2006 May; 12(5): 608-15.
29. Fujii R, Shibata T, Neyatani N, Waseda T, Makinoda S, Utsunomiya T. Granulocyte colony-stimulating factor (G-CSF) prevents luteinized unruptured follicle (LUF) caused clomiphene treatment. Fertility and Sterility. 2013; 100(3): S258. https://doi.org/10.1016/j.fertnstert.2013.07.1087
30. Salmassi A, Schmutzler AG, Schaefer S, Koch K, Hedderich J, Jonat W, et al. Is granulocyte colony-stimulating factor level predictive for human IVF outcome? Hum Reprod. 2005 Sep; 20(9): 2434-40. doi:10.1093/humrep/dei071
31. Moqbel R, Hamid Q, Ying S, Barkans J, Hartnell A, Tsicopoulos A, et al. Expression of mRNA and immunoreactivity for the granulocyte/macrophage colony-stimulating factor in activated human eosinophils. J Exp Med. 1991 Sep; 174(3): 749-52.
32. Watari K, Asano S, Shirafuji N, Kodo H, Ozawa K, Takaku F, et al. Serum granulocyte colony-stimulating factor levels in healthy volunteers and patients with various disorders as estimated by enzyme immunoassay. Blood. 1989 Jan; 73(1): 117-22.
33. Asboe-Hansen G. Endocrine control of connective tissue. Am J Med. 1959 Mar; 26(3): 470-84.
34. Bukulmez O, Arici A. Leukocytes in ovarian function. Hum Reprod Update. 2000 Jan-Feb; 6(1): 1-15.
ارسال پیام به نویسنده مسئول


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Golshan F, Shahbazi M, Haidari K. Effect of exogenous Granulocyte Colony-Stimulating Factor on ovulation and pregnancy rate in NMRI mice. J Gorgan Univ Med Sci 2017; 19 (2) :32-37
URL: http://goums.ac.ir/journal/article-1-3074-fa.html

گلشن فرناز، شهبازی مجید، حیدری کامران. اثر عامل تحریک کننده کلنی گرانولوسیت بر میزان تخمک‌گذاری و موفقیت لانه‌گزینی رویان‌های موش سوری. مجله علمي دانشگاه علوم پزشكي گرگان. 1396; 19 (2) :32-37

URL: http://goums.ac.ir/journal/article-1-3074-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 19، شماره 2 - ( تابستان 1396 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی گرگان Journal of Gorgan University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.09 seconds with 38 queries by YEKTAWEB 4704
Creative Commons License
This work is licensed under a Creative Commons — Attribution-NonCommercial 4.0 International (CC BY-NC 4.0)