[صفحه اصلی ]   [Archive] [ English ]  
:: صفحه اصلي :: معرفي مجله :: آخرين شماره :: آرشيو مقالات :: جستجو :: ثبت نام :: ارسال مقاله :: تماس با ما ::
بخش‌های اصلی
صفحه اصلی::
آرشیو مقالات::
در باره نشریه::
بانک‌ها و نمایه‌نامه‌ها::
هیئت تحریریه::
اعضای اجرایی::
ثبت نام::
راهنمای نگارش مقاله::
ارسال مقاله::
فرم تعهدنامه::
راهنما کار با وب سایت::
برای داوران::
پرسش‌های متداول::
فرایند ارزیابی و انتشار مقاله::
در باره کارآزمایی بالینی::
اخلاق در نشر::
در باره تخلفات پژوهشی::
رضایت‌آگاهانه‌شرکت‌درمطالعه::
لینکهای مفید::
تسهیلات پایگاه::
تماس با ما::
::
جستجو در پایگاه

جستجوی پیشرفته
دریافت اطلاعات پایگاه
نشانی پست الکترونیک خود را برای دریافت اطلاعات و اخبار پایگاه، در کادر زیر وارد کنید.
Google Scholar

Citation Indices from GS

AllSince 2019
Citations66913006
h-index3117
i10-index20773
:: دوره 22، شماره 2 - ( تابستان 1399 ) ::
جلد 22 شماره 2 صفحات 25-18 برگشت به فهرست نسخه ها
اثر نانوذرات اکسید مس بر میزان سمیت، تغییرات آنزیمی و ساختار بافتی کبد موش صحرایی
راضیه کارشناس1 ، علی نوری 2، فاطمه شهبازی3
1- کارشناس ارشد رشته فیزیولوژی جانوری، دانشگاه پیام نور تهران شرق،تهران، ایران
2- استادیار، گروه زیست شناسی، واحد فلاورجان، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران ، ali.noori55@gmail.com
3- استادیار، گروه زیست شناسی، دانشگاه پیام نور، ایران
چکیده:   (7776 مشاهده)

زمینه و هدف: از آنجایی که نانوذرات اکسید مس علاوه بر کاربردهای مفید، ممکن است دارای اثرات سوء بر جانداران باشند؛ این مطالعه به منظور تعیین اثر نانوذرات اکسید مس بر میزان سمیت، تغییرات آنزیمی و ساختار بافتی کبد موش صحرایی انجام شد.

روش بررسی: در این مطالعه تجربی 40 سر موش صحرایی نر نژاد ویستار به‌طور تصادفی در 4 دسته 10 تایی تقسیم شدند. سپس طی مدت 10 روز، 5 مرتبه (به صورت یک روز در میان) به 3 گروه از موش‌ها 10،20 و 30 میلی‌گرم بر کیلو گرم نانوذرات اکسید مس با قطر کمتر از 50 نانومتر و خلوص 99 درصد و سطح 80 مترمربع بر گرم به روش درون صفاقی تزریق گردید و یک گروه به عنوان گروه کنترل در نظر گرفته شد. سپس فعالیت آنزیم‌های لاکتات دهیدروژناز (Lactate dehydrogenase: LDH)، آلکالین فسفاتاز (Alkaline Phosphatase: ALP)، آسپارتات ترانس آمیناز (Aspartate transaminase: AST) و آلانین آمینو ترانسفراز (Alanine aminotransferase: ALT) در دو مرحله خونگیری (یک روز و 15 روز پس از تیمار) مورد بررسی قرار گرفت. همچنین مقاطع بافت کبد با رنگ آمیزی هماتوکسیلین- ائوزین تهیه و مطالعه گردید.

یافته‌ها: فعالیت آنزیم AST بین گروه های مختلف در دو مرحله خونگیری تغییر معنی‌داری نشان نداد. فعالیت آنزیم‌های ALT ، ALP و LDH در اولین خونگیری افزایش معنی‌داری را در هر سه گروه تیمار نسبت به گروه کنترل نشان داد و پس از 15 روز (دومین خونگیری) به حالت طبیعی بازگشت. تغییرات وزن موش‌ها بین گروه‌های مختلف اختلاف آماری معنی‌داری نداشت. بررسی‌های بافت‌شناسی آسیب‌های بافتی متعدد را به صورت وابسته به دوز در گروه‌های تیمار نشان داد که شامل پرخونی خفیف و شدید، دژنراسیون هپاتوسیت‌ها، هایپرپلازی و التهاب بودند.

نتیجه‌گیری: این مطالعه نشان داد که با تزریق دوزهای پایین نانوذرات اکسید مس، پس از گذشت 15 روز، با وجود آن که تغییرات فعالیت آنزیمی به حالت طبیعی بازمی‌گردد؛ اما همچنان اختلالات قابل توجهی در ساختار بافت کبد مشاهده می‌شود.

واژه‌های کلیدی: کبد، نانوذرات اکسید مس، سمیت
Article ID: Vol22-18
متن کامل [PDF 460 kb]   (9501 دریافت)    
نوع مطالعه: تحقيقي | موضوع مقاله: فیزیولوژی - فارماکولوژی
فهرست منابع
1. Chang YN, Zhang M, Xia L, Zhang J, Xing G. The Toxic Effects and Mechanisms of CuO and ZnO Nanoparticles. Materials (Basel). 2012 Dec; 5(12): 2850-71. DOI: 10.3390/ma5122850
2. De Jong WH, Hagens WI, Krystek P, Burger MC, Sips AJ, Geertsma RE. Particle size-dependent organ distribution of gold nanoparticles after intravenous administration. Biomaterials. 2008 Apr; 29(12): 1912-19. DOI: 10.1016/j.biomaterials.2007.12.037
3. Borkow G, Gabbay J, Dardik R, Eidelman AI, Lavie Y, Grunfeld Y, et al. Molecular mechanisms of enhanced wound healing by copper oxide-impregnated dressings. Wound Repair Regen. 2010 Mar-Apr; 18(2): 266-75. DOI: 10.1111/j.1524-475X.2010.00573.x
4. Donaldson K, Tran L, Jimenez LA, Duffin R, Newby DE, Mills N, MacNee W, Stone V. Combustion-derived nanoparticles: a review of their toxicology following inhalation exposure. Part Fibre Toxicol. 2005 Oct; 2: 10. DOI: 10.1186/1743-8977-2-10
5. Galhardi CM, Diniz YS, Rodrigues HG, Faine LA, Burneiko RC, Ribas BO, Novelli EL. Beneficial effects of dietary copper supplementation on serum lipids and antioxidant defenses in rats. Ann Nutr Metab. 2005 Sep-Oct; 49(5): 283-88. DOI: 10.1159/000087294
6. Ramos AS, Correia AT, Antunes SC, Gonçalves F, Nunes B. Effect of acetaminophen exposure in Oncorhynchus mykiss gills and liver: detoxification mechanisms, oxidative defence system and peroxidative damage. Environ Toxicol Pharmacol. 2014 May; 37(3): 1221-28. DOI: 10.1016/j.etap.2014.04.005
7. Chen Z, Meng H, Xing G, Chen C, Zhao Y, Jia G, et al. Acute toxicological effects of copper nanoparticles in vivo. Toxicol Lett. 2006 May; 163(2): 109-20. DOI: 10.1016/j.toxlet.2005.10.003
8. Lei R, Wu C, Yang B, Ma H, Shi C, Wang Q, et al. Integrated metabolomic analysis of the nano-sized copper particle-induced hepatotoxicity and nephrotoxicity in rats: a rapid in vivo screening method for nanotoxicity. Toxicol Appl Pharmacol. 2008 Oct; 232(2): 292-301. DOI: 10.1016/j.taap.2008.06.026
9. Manke A, Wang L, Rojanasakul Y. Mechanisms of nanoparticle-induced oxidative stress and toxicity. Biomed Res Int. 2013; 2013: 942916. DOI: 10.1155/2013/942916
10. Fernando S, Wijewickrama A, Gomes L, Punchihewa CT, Madusanka SD, Dissanayake H, et al. Patterns and causes of liver involvement in acute dengue infection. BMC Infect Dis. 2016 Jul; 16: 319. DOI: 10.1186/s12879-016-1656-2
11. Zimmermann M. Ethical guidelines for investigations of experimental pain in conscious animals. Pain. 1983 Jun; 16(2): 109-10. DOI: 10.1016/0304-3959(83)90201-4
12. Doudi M, Setorki M. Acute effect of nano-copper on liver tissue and function in rat. Nanomed J. 2014; 1(5): 331-38. DOI: 10.7508/NMJ.2015.05.007
13. Genan A Al Bairuty, Mohammad N Taha. Effects of copper nanoparticles on reproductive organs of male albino rats. International Journal for Sciences and Technology. 2016; 11(3): 17-24.
14. Kalirawana TC, Sharma P, Joshi SC. Reproductive Toxicity of Copper Nanoparticles in Male Albino Rats. Int J Pharma Res Health Sci. 2018; 6(1): 2258-63. DOI:10.21276/ijprhs.2018.01.29
15. Zolghadri Jahromi S, Rezaeizadeh M. [The Effect of iron nanoparticles on ovarian histopathological changes in rats treated with isoniazid]. Empirimental Animal Biology Journal. 2018; 6(3): 39-48. [Article in Persian]
16. Liu G, Li X, Qin B, Xing D, Guo Y, Fan R. Investigation of the mending effect and mechanism of copper nanoparticles on a tribologically stressed surface. Tribology Letters. 2004; 17(4): 961-66.
17. Sizova EA, Miroshnikov S, Polyakova V, Gluschenko N, Skalny A. Copper nanoparticles as modulators of apoptosis and structural changes in tissues. J Biomater Nanobiotechnol. 2012; 3: 97-104. DOI: 10.4236/jbnb.2012.31013
18. Magaye R, Zhao J, Bowman L, Ding M. Genotoxicity and carcinogenicity of cobalt-, nickel- and copper-based nanoparticles. Exp Ther Med. 2012 Oct; 4(4): 551-61. DOI: 10.3892/etm.2012.656
19. Singh N, Manshian B, Jenkins GJ, Griffiths SM, Williams PM, Maffeis TG, et al. NanoGenotoxicology: the DNA damaging potential of engineered nanomaterials. Biomaterials. 2009 Aug; 30(23-24): 3891-914. DOI: 10.1016/j.biomaterials.2009.04.009
20. Murray AR, Kisin E, Leonard SS, Young SH, Kommineni C, Kagan VE, Castranova V, et al. Oxidative stress and inflammatory response in dermal toxicity of single-walled carbon nanotubes. Toxicology. 2009 Mar; 257(3): 161-71. DOI: 10.1016/j.tox.2008.12.023
21. Yokohira M, Hashimoto N, Yamakawa K, Suzuki S, Saoo K, Kuno T. Lung Carcinogenic Bioassay of CuO and TiO2 Nanoparticles with Intratracheal Instillation Using F344 Male Rats. J Toxicol Pathol. 2009 Mar; 22(1): 71-78. DOI: 10.1293/tox.22.71
22. Seyedalipour B, Arefifar A, Khanbabaee R, Hoseini S M. [Toxicity investigating of silver nanoparticles on ALT, AST, ALP and histopathological changes in NMRI mice]. J Mazandaran Univ Med Sci. 2015; 25(124): 183-93. [Article in Persian]
23. Fahmy B, Cormier SA. Copper oxide nanoparticles induce oxidative stress and cytotoxicity in airway epithelial cells. Toxicol In Vitro. 2009 Oct; 23(7):1365-71. DOI: 10.1016/j.tiv.2009.08.005
24. Guo D, Bi H, Liu B, Wu Q, Wang D, Cui Y. Reactive oxygen species-induced cytotoxic effects of zinc oxide nanoparticles in rat retinal ganglion cells. Toxicol In Vitro. 2013 Mar; 27(2): 731-38. DOI: 10.1016/j.tiv.2012.12.001
25. Gaiser BK, Hirn S, Kermanizadeh A, Kanase N, Fytianos K, Wenk A, et al. Effects of silver nanoparticles on the liver and hepatocytes in vitro. Toxicol Sci. 2013 Feb; 131(2): 537-47. DOI: 10.1093/toxsci/kfs306
26. García-Niño WR, Pedraza-Chaverrí J. Protective effect of curcumin against heavy metals-induced liver damage. Food Chem Toxicol. 2014 Jul; 69: 182-201. DOI: 10.1016/j.fct.2014.04.016
27. Shin SW, Song IH, Um SH. Role of Physicochemical Properties in Nanoparticle Toxicity. Nanomaterials (Basel). 2015 Sep; 5(3): 1351-65. DOI: 10.3390/nano5031351
ارسال پیام به نویسنده مسئول


XML   English Abstract   Print


Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:

Karshenas R, Noori A, Shahbazi F. Effect of copper oxide nanoparticles on toxicity, enzymatic changes and tissue structure of rat liver. J Gorgan Univ Med Sci 2020; 22 (2) :18-25
URL: http://goums.ac.ir/journal/article-1-3516-fa.html

کارشناس راضیه، نوری علی، شهبازی فاطمه. اثر نانوذرات اکسید مس بر میزان سمیت، تغییرات آنزیمی و ساختار بافتی کبد موش صحرایی. مجله علمي دانشگاه علوم پزشكي گرگان. 1399; 22 (2) :18-25

URL: http://goums.ac.ir/journal/article-1-3516-fa.html



بازنشر اطلاعات
Creative Commons License این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است.
دوره 22، شماره 2 - ( تابستان 1399 ) برگشت به فهرست نسخه ها
مجله دانشگاه علوم پزشکی گرگان Journal of Gorgan University of Medical Sciences
Persian site map - English site map - Created in 0.05 seconds with 38 queries by YEKTAWEB 4645